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　　来自清华大学、哈佛医学院和斯坦福大学等机构的研究人员，通过优化sgRNA的参数提高了CRISPR/Cas9系统在果蝇中的特异性和效率。研究结果发布在10月23日的《Cell Reports》杂志上。

　　清华大学医学院的倪建泉（Jian-Quan Ni）博士和斯坦福大学的Jin Billy Li教授是这篇论文的共同通讯作者。倪建泉的主要研究方向包括干细胞增殖与分化机制、细胞信号的调控与协同、细胞信号与表观遗传学，以及分子和遗传工具的研发。

　　在过去的几年里，人们见证了序列特异性的DNA 核酸内切酶技术的惊人发展，其能够在模式生物中实现精确的基因组编辑，为大大提高我们对于发育生物学和疾病的理解带来了希望。就成本、设计和效率各方面而言，CRISPR/Cas9系统相比于锌指核酸酶(ZFN)和转录激活因子样效应物核酸酶(TALENs)都具有很多的优势。但尽管强大的CRISPR/Cas9系统有着广泛的用途，它的特异性和效率仍是用户群共同关心的两个问题。

　　一些哺乳动物细胞研究表明，单导向RNA (single-guide RNA,sgRNA)和基因组DNA之间核苷酸错配的数量、位置和分布是影响脱靶效应和诱变效率的主要参数。还有研究证实Cas9和sgRNA的表达水平共同影响了诱变效率和脱靶效应。但大多数的细胞系研究都没有独立评估Cas9和sgRNA，一项体内研究表明在某一Cas9表达范围内sgRNA参数是影响特异性和效率的主要因素。

　　近期，国内外的医学研究人员开发出了用于果蝇的CRISPR/Cas9系统。但还没有系统研究评估CRISPR/Cas9系统的效率和特异性。人们迫切期望能够对影响CRISPR/Cas9系统在果蝇中特异性和效率的参数展开系统性的调查。

　　在这篇文章中研究人员发现，脱靶效应并不存在于与sgRNAs有三个或更多核苷酸错配的基因组DNA区域。重要的是，他们证实了诱变效率与 sgRNA的6个前间区序列邻近基序近端核苷酸（protospacer-adjacent motif-proximal nucleotides, PAMPNs）的GC含量之间呈强正相关。

　　此外，研究人员证实通过按照他们确定的优化浓度注入精心设计的sgRNA质粒，可以在一个步骤中有效生成4个基因的突变。最终，利用优化的参数他们通过同源介导的修复(Homology-directed repair, HDR)生成了HP1a的无效等位基因，并获得了相比以前报告的要显著高得多的总诱变率。

　　新研究工作证实了综合优化sgRNA有望大大简化在果蝇中的CRISPR/Cas9实验。